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本制品是在植物RNA提取试剂盒基础上改进得产品，它整合了柱式原位DNase的消化步骤，用于去除植物基因组DNA污染，提取的RNA通过PCR验证不含基因组DNA污染。得到的RNA可直接用于RT-PCR、RT-LAMP、Northern杂交、cDNA合成等实验。

• 操作简单快速，处理一个样品只需要约十几分钟。
  
• 所得RNA的OD260/280一般都在2.0左右。
  
• 能够有效去除多糖、多酚和基因组DNA的污染。
  
• 所提取RNA不含基因组DNA污染（电泳及PCR均检测不到）。
  
• 本试剂盒不能用于miRNA的纯化。

• 准备材料。每次微量提取一般需要100～200mg植物叶片、或50～100mg植物种子、或200～500mg植物果实。
  
• 样品破碎：
  
  • 匀浆法：先将新鲜植物组织用剪刀剪成小块，放入10～15mL塑料离心管中，加入1mL植物RNA纯化溶液A，然后用匀浆器匀浆5～20秒。匀浆时会产生泡沫，但不影响提取效果。将1mL匀浆液转移到1.5mL的塑料离心管中，有的植物组织（比如果实）含有大量水份，匀浆液会多于1mL，转移时也只取1mL。
    
  • 液氮研磨法（适用于复杂，易降解样品）：取适量新鲜植物组织放入含液氮的研钵中，迅速将组织研磨成粉末后，将粉末转移到1.5mL的塑料离心管中，加入1mL植物RNA纯化溶液A，立即剧烈振荡20秒，充分混匀。
• 在装有1mL匀浆液或研磨物的离心管中加入0.3mL的植物RNA纯化溶液B和0.2mL自备氯仿，在振荡器上振荡30秒混匀，此时溶液呈均匀的乳浊状。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。
  
• 室温13000rpm离心3～5分钟，两相间将有约5毫米厚的细胞破碎物。
  
• 将上清液(约0.6mL)转移到另一干净的1.5mL塑料离心管中，下层有机相和中间层含有DNA、蛋白质和其他杂质，避免触及或吸取。
  
• 加入跟上清液等体积的植物RNA纯化溶液C，充分颠倒混匀。如果有沉淀产生（对某些植物，属于正常现象），千万不要去掉沉淀。
  
• 将一半的混合液（包括沉淀物）转移到离心吸附柱中，13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 将剩下的一半的混合液（包括沉淀物）转移到同一离心吸附柱中，13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 加0.7mL通用洗柱液，13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。再加0.3mL通用洗柱液，13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 13000rpm室温离心10秒以便去除残留液体。此步很重要，否则残留的通用洗柱液会抑制后续反应中DNase的活性。
  
• 配制DNase硅胶模工作液：将2μL(10U)本试剂盒提供的RNase-free DNase，5μL 10×硅胶模DNase反应液和43μL RNA洗脱液混合，共50μL。
  
• 将DNase工作液全部50μL加入到离心吸附柱中，室温放置10～30分钟。
  
• 直接在离心吸附柱中加0.7mL通用洗柱液。
  
• 13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 再加0.3mL通用洗柱液到离心吸附柱中，13000rpm室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 13000rpm室温离心半分钟。此步十分重要，否则残留的乙醇（通用洗柱液中的成分）会影响RNA的使用。
  
• 将离心吸附柱转移到RNase-free收集管中，加入50μL RNA洗脱液，室温放置2分钟。
  
• 13000rpm室温离心半分钟，离心管中溶液即为RNA样品。
  
• 所得RNA溶液可以立即使用或存放于-80℃待用。如果要进行甲醛变性电泳检测。如果使用非变性胶电泳，则必须使用RNA专门的上样液。千万不能使用DNA上样液（因为它一般没有经过去RNase处理）。